Pemeriksaan Sputum

01.17 | Posted by Unknown



BAB I
PENDAHULUAN
1.1        Latar Belakang
Melihat dan mengamati bakteri dalam kedaan hidup sangat sulit, karena selain bakteri itu tidak berwarna juga transparan dan sangat kecil. Untuk mengatasi hal tersebut maka dikembangkan suatu teknik pewarnaan sel bakteri, ini merupakan salah satu cara yang paling utama dalam penelitian-penelitian mikrobiologi.
Prinsip dasar dari pewarnaan ini adalah adanya ikatan ion antara komponen seluler dari bakteri dengan senyawa aktif dari pewarnaan yang disebut kromogen. Terjadi ikatan ion karena adanya muatan listrik baik pada komponen seluler maupun pada pewarnaan. Berdasarkan adanya muatan ini maka dapat dibedakan pewarna asam dan pewarna basa.
Bakteri yang memiliki ciri-ciri berantai karbon (C) yang panjangnya 8– 95 mikrometer dan memiliki dinding sel yang tebal yang terdiri dari lapisan lilin dan asam lemak mikolat, lipid yang ada bisa mencapai 60%  dari berat dinding sel disebut Basil Aahan Asam (BTA). Bakteri ini ada 41 spesies yang telah diakui oleh ICSB (International Committe On Systematic Bacteriology) yang sebagian besar sudah saprofit dan sebagian kecil lainnya patogen untuk manusia diantaranya Mycobacterium tuberculosa, Mycobacterium leparae dan lain-lainya yang dapat menyebabkan infeksi kronik. Golongan saprofit dikenal juga dengan nama atipik.
Mikroorganisme di dunia ini ada yang menguntungkan dan ada juga yang merugikan. Mikroorganisme yang menguntungkan dapat kita manfaatkan untuk kepentingan kesejahteraan hidup manusia, akan tetapi, banyak juga mikroorganisme yang tidak menguntungkan kita yaitu dengan menyebabkan terjadinya penyakit pada tubuh manusia. Salah satu mikroorganisme yang dapat menyebabkan atau menginfeksi manusia adalah Mycobacterium tuberculosis. Bakteri ini dapat mengakibatkan penyakit tuberculosis pada manusia. Tuberculosis merupakan salah satu penyakit yang mematikan dan berbahaya di dunia. Berdasarkan hal inilah yang menjadi latar belakang dilaksanakannya percobaan ini untuk mengetahui teknik pewarnaan Basil Tahan Asam (BTA) dan mengamati tingkat infeksi dari sputum apakah terdapat Mycobacterium atau tidak.
1.2        Tujuan
Adapun tujuan dilaksanakannya praktikum pemeriksaan sputum ini adalah :
1.     Untuk mengetahui teknik pewarnaan Basil Tahan Asam (BTA).
2.     Untuk mengamati Mycobacterium (jika ada) dan mengetahui tingkat infeksi dari sputum.
1.3        Manfaat
Adapun manfaat yang diperoleh dari hasil praktikum yang telah dilaksanakan yaitu mengetahui teknik pewarnaan Basil Tahan Asam (BTA) dan mengetahui tingkat infeksi dari sputum di mana pada sputum tersebut terdapat  Mycobacterium atau tidak. Selain itu manfaat bagi seorang tenaga kesehatan masyarakat adalah kita dapat mengetahui diagnosa awal dari sputum yang terinfeksi oleh bakteri Mycobacterium tuberculose, di mana bakteri ini dapat menyebabkan penyakit TBC yang sangat berbahaya jika tidak di ketahui diagnosanya sejak dini.

BAB II
TINJAUAN PUSATAKA
Bakteri memiliki beberapa bentuk yaitu basil (tongkat), coccus, spirilum. Bakteri yang berbentuk tongkat maupun coccus dibagi menjadi beberapa macam. Pada bentuk basil pembagiannya yaitu basil tunggal, diplobasil dan tripobasil. Pada coccus dibagi menjadi Monococcus, Diplococcus dan Staphylococcus. Khusus pada spirilum hanya dibagi dua yaitu setengah melengkung dan melengkung (Dwidjoseputro, 1998).
Melihat dan mengamati bakteri dalam kedaan hidup sangat sulit, karena selain bakteri itu tidak berwarna juga transparan dan sangat kecil. Untuk mengatasi hal tersebut maka dikembangkan suatu teknik pewarnaan sel bakteri, ini merupakan salah satu cara yang paling utama dalam penelitian-penelitian mikrobiologi (Dwidjoseputro, 1998).
Mikroorganisme sulit dilihat dengan mikroskop cahaya, karena tidak mengabsorpsi ataupun membiaskan cahaya. Alasan inilah yang menyebabkan zat warna digunakan untuk mewarnai mikroorganisme ataupun latar belakangnya. Zat warna mengabsorpsi dan membiaskan cahaya sehingga kontras mikroorganisme disekelilingya ditingkatkan. Penggunaan zat warna memungkinkan pengamatan struktur sel seperti spora dan bahan infeksi yang mengandung zat pati dan granula fosfat. Pewarnaan yang digunakan untuk melihat salah satu struktur sel disebut pewarnaan khusus, sedangkan pewarnaan yang digunakan untuk memilahkan mikroorganisme disebut pewarnaan diferensial yang memilahkan bakteri menjadi kelompok gram positif dan gram negatif. Pewarnaan diferensial lainnya ialah pewarnaan Ziehl Neelsen yang memilahkan bakteri menjadi kelompok-kelompok tahan asam dan tidak tahan asam (Dwidjoseputro, 1998).
Metode pengecatan pertama kali ditemukan oleh Christian Gram pada tahun 1884. Dengan metode ini, bakteri dapat dikelompokkan menjadi dua, yaitu bakteri gram positif dan bakteri gram negatif, yang didasarkan dari reaksi atau sifat bakteri terhadap cat tersebut. Reaksi atau sifat bakteri tersebut ditentukan oleh komposisi dinding selnya, sehingga pengecatan gram tidak bisa dilakukan pada mikroorganisme yang tidak mempunyai dinding sel seperti Mycoplasma sp (Waluyo, 2004).
Teknik Pewarnaan bukan pekerjaan yang sulit tapi perlu ketelitian dan kecermatan bekerja serta mengikuti aturan dasar yang berlaku (Lay, 1994).
Tujuan dari pewarnaan adalah untuk mempermudah pengamatan bentuk sel bakteri, memperluas ukuran jasad, mengamati struktur dalam dan luar sel bakteri dan melihat reaksi jasad terhadap pewarna yang diberikan sehingga sifat fisik atau kimia jasad dapat diketahui (Hadiutomo, 1990).
Berhasil tidaknya suatu pewarnaan sangat ditentukan oleh waktu pemberian warna dan umur biakan yang diwarnai (umur biakan yang baik adalah 24 jam). Umumnya zat warna yang digunakan adalah garam-garam yang dibangun oleh ion-ion yang bermuatan positif dan negatif dimana salah satu ion tersebut berwarna. Zat warna dikelompokkan menjadi dua, yaitu zat pewarna yang bersifat asam dan basa. Jika ion yang mengandung warna adalah ion positif maka zat warna tersebut disebut pewarna basa dan bila ion yang mengandung warna adalah ion negatif maka zat warna tersebut disebut pewarna negatif (Hadiutomo, 1990).
Zat warna yang digunakan dalam pewarnaan bersifat basa dan asam. Pada zat warna basa bagian yang berperan dalam memberikan warna disebut kromofor dan memiliki muatan positif, sebaliknya pada zat warna asam bagian yang berperan memberikan zat warna mempunyai muatan negatif. Zat warna basa lebih banyak digunakan karena muatan negatif banyak ditemukan di dinding sel, membran sel dan sitoplasma. Sewaktu proses pewarnaan muatan positif pada zat warna basa akan berkaitan dengan muatan negatif dalam sel, sehingga mikroorganisme lebih jelas terlihat (Dwidjoseputro, 1998).
Zat warna asam yang bermuatan negatif lazimnya tidak digunakan untuk mewarnai mikroorganisme, namun biasanya dimanfaatkan untuk mewarnai latar belakang sediaan pewarnaan. Zat warna asam yang bermuatan negatif ini tidak dapat berkaitan dengan muatan negatif yang terdapat pada struktur sel. Terkadang zat warna negatif digunakan untuk mewarnai bagian sel yang bermuatan positif, perlu diperhatikan bahwa muatan dan daya ikat zat warna terhadap struktur sel dapat berubah bergantung pada pH sekitarnya sewaktu proses pewarnaan (Dwidjoseputro, 1998).
Prosedur pewarnaan yang menghasilkan pewarnaan mikroorganisme disebut pewarnaan positif dalam prosedur pewarnaan ini dapat digunakan zat warna basa yang bermuatan positif maupun zat warna asam yang bermuatan negatif, sebaliknya pada pewarnaan negatif latar belakang di sekeliling mikroorganisme diwarnai untuk meningkatkan kontras dengan mikroorganisme yang tak berwarna. Pewarnaan mencakup penyiapan mikroorganisme dengan melakukan preparat ulas (Dwidjoseputro, 1998).
Sebelum dilakukan pewarnaan dibuat ulasan bakteri di atas kaca objek. Ulasan ini kemudian difiksasi. Jumlah bakteri yang terdapat pada ulasan haruslah cukup banyak sehingga dapat terlihat bentuk dan penataanya sewaktu diamati. Kesalahan yang sering kali dibuat adalah menggunakan suspensi bakteri yang terlalu padat terutama bila suspensi tersebut berasal dari bukan media padat, sebaliknya pada suatu suspensi bakteri bila terlalu encer, maka akan diperoleh kesulitan sewaktu mencari bakteri pada preparatnya (Sutedjo, 1991).
Pada pewarnaan sederhana hanya digunakan satu macam zat warna untuk meningkatkan kontras antara mikroorganisme dan sekelilingnya. Lazimnya, prosedur pewarnaan ini menggunakan zat warna basa seperti seperti crystal violet, methylen blue, karbol fuchsin basa, safranin atau hijau malakit. Kadang kala digunakan zat warna negatif untuk pewarnaan sederhana. Zat warna asam yang sering digunakan adalah nigrosin dan merah kongo (Lay, 1994).
Pewarnaan Ziehl Neelsen atau pewarnaan tahan asam memilahkan kelompok Mycobacterium dan Nocandia dengan bakteri lainnya. Kelompok bakteri ini disebut bakteri tahan asam karena dapat mempertahankan zat warna pertama (karbol fuchsin) sewaktu dicuci dengan larutan pemucat (alkohol asam). Larutan asam terlihat berwarna merah, sebaliknya pada bakteri yang tidak tahan asam karena larutan pemucat (alkohol asam) akan melakukan reaksi dengan karbol fuchsin dengan cepat, sehingga sel bakteri tidak berwarna (Lay, 1994).
Basil tahan asam merupakan bakteri yang kandungan lemaknya sangat tebal sehingga tidak bisa diwarnai dengan reaksi pewarnaan biasa, tetapi harus dengan pewarnaan tahan asam. Kelompok bakteri ini disebut Basil Tahan Asam (BTA) karena dapat mempertahankan zat warna pertama sewaktu dicuci dengan larutan pemucat. Golongan bakteri ini biasanya bersifat patogen pada manusia contohnya adalah Mycobacterium tuberculosis. Bakteri Mycobacterium tuberculosis dapat diisolasi dari sputum penderita TBC. Reaksi hasil pewarnaannya jika positif terdapat bakteri TBC berwarna merah. Selain menyerang manusia juga menyerang hewan seperti marmut, dan kera. Penularannya dapat melalui udara yang masuk ke saluran pernapasan (Pelczar, 1988).
Percobaan tentang transmisi penyakit TBC pertama kali dilakukan oleh Klencke pada tahun 1843. Klencke memproduksi TBC di dalam tubuh kelinci dengan inokulasi jaringan TBC secara intravena. Infeksi oleh kuman TBC juga dibuktikan oleh Villemin pada tahun 1865 dengan cara memproduksi penyakit ini pada kelinci dengan inokulasi jaringan TBC tipe human dan bovine. Dia yang pertama kali mendemonstrasikan perbedaan resistensi kelinci terhadap organisme tipe human dan bovine. Villemin menyimpulkan bahwa TBC adalah penyakit spesifik,  TBC disebabkan oleh agen inocilable, penyakit ini dapat menular dari manusia ke kelinci, TBC adalah penyakit yang mematikan. Robert Koch merupakan penemu Mycobacterium tuberculosis pada tanggal 24 Maret 1882, sehingga untuk mengenang jasanya bakteri tersebut diberi nama basil Koch. Bahkan, penyakit TBC pada paru-paru kadang disebut sebagai Koch Pulmonum (KP). Bakteri ini berbentuk batang dan bersifat tahan asam sehingga dikenal juga sebagai Basil Tahan Asam (BTA)  (Pelczar, 1988).
Tuberkulosis atau TB (singkatan yang sekarang ditinggalkan adalah TBC) adalah penyakit infeksi yang disebabkan oleh bakteri Mycobacterium tuberculose. Penyakit ini paling sering menyerang paru-paru walaupun pada sepertiga kasus menyerang organ tubuh lain dan ditularkan orang ke orang. Ini juga salah satu penyakit tertua yang diketahui menyerang manusia (Brooks, 2005).
Cara diagnosa penyakit TBC dengan menggunakan pendekatan mikrobiologis adalah dengan pewarnaan Basil Tahan Asam (BTA). Pewarnaan Basil Tahan Asam (BTA) menggunakan beberapa teknik atau metode pewarnaan. Teknik pewarnaan tersebut antara lain Tan Thiam Hok (Kinyoun Gabber), Ziehl-Neelsen, dan Fluorokrom. Metode Ziehl-Neelsen merupakan pewarnaan standar untuk mengamati Mycobacterium tuberculosis (Kurniawati, 2005).
Mycobacterium tuberculosis berbentuk batang, berukuran panjang 5µ dan lebar 3µ, tidak membentuk spora dan termasuk bakteri aerob. Mycobacterium tuberculose dapat diberi pewarnaan seperti bakteri lainnya, misalnya dengan Pewarnaan Gram. Namun, sekali Mycobacterium diberi warna oleh pewarnaan gram, maka warna tersebut tidak dapat dihilangkan dengan asam, oleh karena itu, maka Mycobacterium disebut sebagai Basil Tahan Asam (BTA). Beberapa mikroorganisme lain yang juga memiliki sifat tahan asam, yaitu spesies Nocardia, Rhodococcus dan Legionella micdadei. Pada dinding sel Mycobacterium tuberculose, lemak berhubungan dengan arabinogalaktan dan peptidoglikan di bawahnya. Struktur ini menurunkan permeabilitas dinding sel, sehingga mengurangi efektivitas dari antibiotik. Lipoarabinomannan, suatu molekul lain dalam dinding sel Mycobacterium, berperan dalam interaksi antara inang dan patogen, menjadikan Mycobacterium tuberculosis dapat bertahan hidup di dalam makrofag (Thomas, 1999).
Tuberkulosis (TBC) yang disebabkan oleh Mycobacterium tuberculosis yang menyerang paru dan juga memberikan efek terhadap susunan saraf pusat, sistem limfatik, sistem sirkulasi, sistem urogenital, tulang, tulang sendi dan kulit. Penyakit ini diketahui dapat menyerang semua bangsa burung, mamalia, primata termasuk manusia. Selain Mycobacterium tuberculosis (tipe human), dikenal juga spesies Mycobacterium bovis dan Mycobacterium avium. Mycobacterium bovis dan Mycobacterium avium jarang terjadi pada orangutan. Hanya terdapat sekitar 10% laporan kasus TBC pada primata yang disebabkan oleh Mycobacterium bovis. TBC tipe Human paling banyak ditemukan pada primata dan manusia (Sari, 2004).
Tuberkulosis paru (TB) adalah penyakit radang parenkim paru karena infeksi kuman Mycobacterium tuberculosis. Tuberkulosa paru termasuk suatu pneumonia, yaitu pneumonia yang disebabkan oleh Mycobacterium tuberculosis. Tuberkulosa paru mencakup 80% dari keseluruhan kejadian penyakit tuberkulosa, sedangkan 20% selebihnya merupakan tuberkulosa ekstrapulmonar. Diperkirakan bahwa sepertiga penduduk dunia pernah terinfeksi kuman Mycobacterium tuberculosis (Darmanto, 2010).
Sistem kekebalan tubuh (pertahanan) dapat melawan infeksi dan menghentikan bakteri yang menyebar. Sistem kekebalan tubuh akhirnya dengan membentuk jaringan parut mengelilingi Mycobacterium tuberculosa dan mengisolasi seluruh tubuh (Darmanto, 2010).
BAB III
METODOLOGI
3.1        Waktu dan Tempat
Adapun waktu dan tempat dilaksanakannya praktikum pemeriksaan sputum yaitu :
Hari/Tanggal      :   Sabtu, 13 April 2013
Waktu                :   13.00 WITA-Selesai
Tempat               :    Laboratorium   Terpadu    Fakultas   Kedokteran    dan Ilmu
                             Kesehatan Universitas Tadulako.
3.2        Alat dan Bahan
Adapun alat dan bahan yang digunakan dalam praktikum pemeriksaan sputum yaitu :
3.2.1  Alat
1.      Mikroskop
2.      Pipet tetes
3.      Kaca objek
4.      Bunsen
5.      Hand sprayer
6.      Korek api
7.      Lidi
8.      Penjepit tabung
3.2.2  Bahan
1.      Sputum (dahak)
2.      Alkohol asam 3%
3.      Karbol fuchsin 0,3%
4.      Aquadest
5.      Methylen Blue
6.      Spritus
7.      Alkohol 70%
8.      Handskun
9.      Masker
3.3        Prosedur Kerja
Adapun prosedur kerja yang di lakukan dalam praktikum ini yaitu :
1.         Memakai masker dan handskun sebelum melakukan percobaan.
2.         Mensterilkan tangan dan alat-alat yang akan digunakan, sebelum melakukan percobaan dengan menggunakan alkohol 70%
3.         Preparat di buat secara langsung dengan meletakkan sampel sputum di atas kaca objek dengan menggunakan lidi (dalam keadaan aseptis).
4.         Menunggu sampel sputum yang berada pada kaca objek sampai kering.
5.         Menetesi karbol fuchshin 0,3 % pada sampel yang sudah kering.
6.         Memfiksasi sampel di atas api bunsen sampai adanya asap yang muncul.
7.         Kemudian mencuci sampel dengan menggunakan aquades mengalir dan menunggu sampai sampel kering kembali.
8.         Meneteskan dengan alcohol asam 3%, lalu mencuci menggunakan aquades mengalir dan mengerinkannya.
9.         Meneteskan cairan methylen blue pada sampel dan menunggu hingga 20-30 detik.
10.     Membersihkan kembali sampel dengan menggunakan aquades mengalir, setelah itu menunggu sampai sampel kering kembali.
11.     Mengamati sampel dengan menggunakan mikroskop.
12.     Mengambil gambar dari sampel yang terlihat melalui mikroskop.
BAB IV
HASIL DAN PEMBAHASAN
4.1        Hasil Pengamatan

No.

Kelompok
Gambar

Keterangan
Sampel
Literatur
1.

I

Positif (+)
Positif (+)
Negatif (-)
2.

II

Positif (+)
Negatif (-)
Negatif (-)
3.

III

Positif (+)
Positif (+)
Negatif (-)
4.

IV

Positif (+)
Positif (+)
Negatif (-)
5.

V

Positif (+)
Negatif (-)
Negatif (-)
6.

VI

Positif (+)
Negatif (-)
Negatif (-)
4.2        Pembahasan
Pada percobaan ini bertujuan untuk mengetahui teknik pewarnaan Basil Tahan Asam (BTA) dan mengamati tingkat infeksi dari sputum apakah terdapat Mycobacterium atau tidak. Sampel yang di gunakan untuk menguji ada atau tidaknya Mycobaterium yaitu sputum. Sputum adalah lendir dan materi lainnya yang dibawa dari paru-paru, bronkus dan trakea yang mungkin dibatukkan dan dimuntahkan atau ditelan. Uji Basil Tahan Asam (BTA) pada praktikum kali ini menggunakan prosedur pewarnaan Ziehl Neelsen yaitu dengan memberi larutan pewarna karbol fuchsin, alkohol asam dan methylen blue. Pewarnaan tahan asam dapat digunakan untuk membantu menegakkan diagnosa tuberkulosis.
Pewarnaan tahan asam menggunakan larutan Ziehl-Neelsen A (karbol fuchsin), Ziehl-Neelsen B (alkohol asam : HCL 3% dalam metanol 95%) dan Ziehl-Neelsen C (methylen blue). Hasil pewarnaan maka basil tahan asam akan berwarna merah dan basil tidak tahan asam akan berwarna biru. Basil tahan asam (BTA) merupakan bakteri yang memiliki ciri-ciri yaitu berantai karbon (C) yang panjangnya 8-95 mikrometer dan memiliki dinding sel yang tebal yang terdiri dari lapisan lilin dan asam lemak mikolat, lipid yang ada bisa mencapai 60% dari berat dinding sel. Mycobacterium tuberculose adalah bakteri patogen yang dapat menyebabkan penyakit tuberculosis dan bersifat tahan asam sehingga digolongkan sebagai Basil Tahan Asam (BTA).
Sebelum semua prosedur kerja dilakukan terlebih dahulu harus memakai masker dan handskun agar tidak terkontaminasi oleh sputum yang positif oleh Mycobacterium tuberculose, yang mana bakteri ini dapat terhirup ketika bernapas dan tangan harus disterilkan menggunakan alkohol 70% yang disemprotkan ke seluruh permukaan tangan.
Langkah selanjutnya preparat yang sudah di buat difiksasi, yaitu dengan membersihkan kotoran dengan alkohol pada objek glass, fiksasi bertujuan untuk mematikan bakteri tetapi tidak mengubah struktur sel bakteri, lalu sputum diletakkan di atasnya dengan menggunakan lidi yang telah di sterilkan dengan alkohol setipis mungkin kemudian dilakukan pengeringan.
Objek glass yang telah kering lalu di tetesi karbol fuchsin 0,3% yang berfungsi mewarnai seluruh sel bakteri. Objek glass kemudian dipanaskan tetapi tidak sampai mendidih, hanya sampai adanya asap dari sampel yang dipanaskan hal ini dilakukan untuk membuka dinding sel dari bakteri sehingga  karbol fuchsin dapat di serap oleh bakteri yang menjadi pewarna bagi bakteri itu sendiri.
Langkah selanjutnya objek glass di cuci dengan menggunakan aquades mengalir dan dikeringkan, Perlakuan pencucian dengan menggunakan aquades mengalir bertujuan untuk menutup kembali lemak pada bakteri. Setelah kering objek glass di teteskan dengan alkohol asam 3%, tujuan pemberian alkohol asam 3% adalah meluruhkan warna dari karbol fuchsin, tetapi pada golongan BTA tidak terpengaruh pemberian alkohol asam 3% karena memiliki lapisan lipid yang sangat tebal sehingga alkohol sukar menembus dinding sel bakteri tersebut dan memberi warna merah akibat karbol fuchsin tidak hilang, kemudian di cuci kembali menggunakan aquades mengalir dan dikeringkan.
Objek glass kemudian di teteskan methylen blue sampai menutupi semua permukaan objek glass dan di diamkan selama 20-30 detik. Pemberian methylen blue bertujuan untuk memberi warna background, kemudian di cuci kembali menggunakan aquades mengalir dan dikeringkan.
Langkah selanjutnya yaitu mengamati objek glass dengan menggunkan mikroskop dengan menggunakan pembesaran 10X10 untuk melihat apakah sampel yang di amati mengandung bakteri Mycobacterium tuberculose atau tidak. Hasil pewarnaan positif pada Mycobacterium tuberculose akan menunjukkan warna merah dan negatif akan berwarna biru.
Dari hasil pengamatan di peroleh bahwa pada sampel sputum I, III dan IV positif terdapat adanya bakteri Mycobaterium tuberculose ini di tandai dengan adanya warna merah dengan latar biru pada pengamatan melalui mikroskop,  sedangkan pada sampel sputum II, V dan VI negatif karena hanya terdapat warna latar biru pada pengamatan melalui mikroskop.
Berdasarkan hasil percobaan diatas maka dapat dikatakan percobaan ini telah berhasil. Di mana menurut Pelczar (1988), Basil Tahan Asam (BTA) merupakan bakteri yang kandungan lemaknya sangat tebal sehingga tidak bisa diwarnai dengan reaksi pewarnaan biasa, tetapi harus dengan pewarnaan tahan asam. Kelompok bakteri ini disebut basil tahan asam (BTA) karena dapat mempertahankan zat warna pertama sewaktu dicuci dengan larutan pemucat. Golongan bakteri ini biasanya bersifat patogen pada manusia contohnya adalah Mycobacterium tuberculosis. Bakteri Mycobacterium tuberculosis dapat diisolasi dari sputum penderita TBC. Reaksi hasil pewarnaannya jika positif terdapat bakteri TBC berwarna merah.
BAB V
PENUTUP
5.1        Kesimpulan
Adapun kesimpulan yang dapat diambil dari praktikum ini adalah :
1.      Pewarnaan tahan asam adalah pewarnaan yang menggunakan larutan Ziehl-Neelsen A (karbol fuchsin), Ziehl-Neelsen B (alkohol asam HCL 3% dalam metanol 95%) dan Ziehl-Neelsen C (methylen blue). Hasil pewarnaan maka bakteri tahan asam akan berwarna merah dan bakteri tidak tahan asam akan berwarna biru. Pewarnaan tahan asam dapat digunakan untuk membantu menegakkan diagnosa tuberkulosis.
2.      Sampel sputum pada kelompok I, III, dan IV menunjukkan hasil positif karena ditemukannya bakteri Mycobacterium tuberculose dalam sampel yang diamati sedangkan pada sampel sputum pada kelompok II, V, dan VI menunjukkan hasil yang negatif.
5.2        Saran
Adapun saran yang ingin disampaikan oleh penulis adalah Pengujian tentang Mycobacterium tuberculosis lebih lanjut diharapkan bisa dilakukan dengan metode molekuler dengan teknik PCR yang dapat digunakan secara luas baik di negara maju maupun di negara berkembang karena M. tuberculosis merupakan salah satu bakteri penyebab infeksi paru-paru tuberkulosis yang menjadi perhatian bagi dunia kesehatan dan berhati-hati dalam melakukan prosedur kerja, karena apabila tidak berhati-hati bisa saja bakteri yang dapat menyebabkan penyakit TBC terhirup dan menginfeksi.
DAFTAR PUSTAKA
Brooks, 2008. Tuberkulosis Paru Resisten Ganda. Di kutip oleh Ayu Setiawati. 2010. Fakultas Kedokteran Universitas Sumatera Utara. Medan.
Darmanto, 2010. Ilmu Penyakit Paru. Di kutip dari tulisan Rizqi Nugraheni Putri.  2011. Trans Info Media. Jakarta.
Dwidjoseputro, 1989. Dasar-dasar Mikrobiologi. Djambatan. Malang. Di akses pada tanggal 14 April 2013 pukul 17.44 WITA.
Hadiutomo, 1990. Mikrobiologi Dasar Jilid I. Erlangga. Jakarta. Di akses pada tanggal 14 April 2013 pukul 17.53 WITA.
Kurniawati. 2005. Perbandingan Tan Thiam Hok, Ziehl Neelsen, dan Fluorokrom sebagai Metode Pewarnaan Basil Tahan Asam untuk Pemeriksaan Mikroskopis Sputum. Di kutip dari tulisan Zita Marisa. Vol 9, juni 2005 : 29-33. Makara Kesehatan.
Lay, 1994. Analisis Mikroba di Laboratorium. PT Raja Grafindo Persada. Jakarta. Di akses pada tanggal 14 April 2013 pukul 17.44 WITA.
Pelczar,  1988. Dasar-Dasar Mikrobiologi Jilid 2. UI Press. Jakarta. Di akses pada tanggal 14 April 2013 pukul 17.44 WITA.
Sari, 2004. Penyakit Infeksius yang menular Melalui Udara pada Orangutan (Pongo pygmaeus). Di kutip oleh Ayu Brilian Wardani. 2011. Fakultas Kedokteran Hewan Institut Pertanian Bogor. Bogor.
Sutedjo, 1991. Mikrobiologi Tanah. Rineka Cipta. Jakarta. Di akses pada tanggal 14 April 2013 pukul 17.55 WITA.
Thomas, 1999. The White Death: A History of Tuberculosis. Di kutip oleh Isa Muhamad Raden. 2011. Universitas Diponegoro. Semarang.
Waluyo, 2004. Mikrobiologi Umum. UMM Press. Malang. Di akses pada tanggal 14 April 2013 pukul 17.44 WITA.

Read Users' Comments (0)

0 Response to "Pemeriksaan Sputum"

Posting Komentar

Langganan: Posting Komentar (Atom)